70. Які запобіжні заходи щодо залишкового визначення хлору?
Хлор дуже нестабільний у водному розчині, особливо при низьких концентраціях, і вміст швидко зменшиться. Швидкість зниження хлору буде прискорена при вплиді сонячного світла та іншого сильного світла або агітованого. Тому зразок не може зберігатися після відбору проб, і визначення хлору необхідно розпочати негайно, уникаючи впливу світла та збудження зразка води.
Усі операції під час процесу визначення повинні уникати прямого впливу сонячних променів, і найкраще здійснюватись при найменшій можливої температури та м'якому світлі. Крім того, всі колориметричні методи потребують кольорових та помутніння, щоб компенсувати колір та хроматичність сирої води, особливо коли помутніння та хроматичність високі, потрібно визначити порожнє значення.
При використанні о-толідінового зорового колориметричного методу для визначення залишкового хлору, якщо зразок води змішаний рівномірно зі стандартним розчином O-толідин, а потім колориметричний метод проводиться негайно, вимірюваний результат-це вільний залишковий хлор. Якщо зразок води розміщується в темному місці протягом 10 хвилин для отримання найвищої хроматичності до проведення колориметричного методу, результат - загальний залишковий хлор. Загальний залишковий хлор мінус вільного залишкового хлору - це комбінований залишковий хлор.
При використанні о-толідинного візуального колориметричного методу для визначення, чи залишається залишковий хлор, буде створений помаранчевий жовтий колір; Якщо лужність зразка води занадто висока, а залишковий хлор невеликий, буде вироблено світло -зелений або світло -синій колір. У цей час можна додати 1 мл стандартного розчину O-толідину для отримання нормального світло-жовтого кольору.
71. Які відмінності між біологічною фазою методу біоплівки та активованим мулом?
Характеристики біологічної фази системи лікування біоплівки відрізняються від характеристик процесу активованого мулу, головним чином з точки зору мікробних видів та розподілу.
Взагалі кажучи, через поступову зміну якості води та поліпшення стану навколишнього середовища для зростання мікробів типи та кількості мікроорганізмів у системній біоплівці є більш ніж ті, що знаходяться в процесі активованого мулу, а харчовий ланцюг довгий і складніший, особливо збільшення кількості ниткоподібних фондів, поступового та метазойського бак -баління. Водорості можуть з’являтися в областях, що піддаються сонячному світлу, а також можуть з’являтися комахи, такі як фільтрувальні мухи. Характеристики розподілу полягають у тому, що вздовж товщини біоплівки (від поверхні в внутрішню частину) або напрямку впливу (різний час контакту з впливом), типи та кількість мікроорганізмів демонструють великі відмінності. На першій стадії багатоступеневої обробки або верхньої частини шару наповнювача потоку вниз у біоплівці часто переважають флокулентні бактерії, а товщина плівки також відносно велика (2-3 мм); Зі збільшенням кількості стадій або нижньої частини шару наповнювача потоку вниз, оскільки якість води, яку вона контактує, частково оброблена, більш нитки бактерії, найпростіші та метазоа поступово з'являться в біоплівці; Типи мікроорганізмів збільшуються, але товщина біоплівки постійно зменшується (1-2 мм). Мікроорганізми на поверхні біоплівки є аеробними, і у міру збільшення товщини мікроорганізми поступово стають факультативними або навіть анаеробними.
Біоплівка фіксується на фільтрованому матеріалі або наповнювачі, а біологічний час утримання твердого періоду СРТ (вік мулу) довгий, тому він може вирощувати мікроорганізми з часом тривалого покоління та дуже низькою швидкістю проліферації, такими як нітрифікуючі бактерії. Велика кількість ниткоподібних бактерій також може з’явитися на біоплівці, але обсяг мулу не відбудеться. Порівняно з методом активованого мулу, частка харчування тварин у організмах біоплівки більша, швидкість виживання мікро-тварин також вища, і вона може населяти організми високого рівня енерго. Олігочет та комахи мешкають вище хижацьких кінців, ротифікаторів та нематод. Тому харчовий ланцюг на біоплівці довший, ніж харчовий ланцюг в активованому мулі, саме тому кількість мулу, що виробляється методом біоплівки, менша, ніж у методу активованого мулу.
Характерні мікроорганізми на кожному рівні або кожен шар наповнювача будуть різними через різну якість стічних вод, тобто зміни якості води спричинить зміни типів та кількості мікроорганізмів у біоплівці. Коли впливова концентрація збільшується, можна помітити, що характерні мікроорганізми початкового рівня рухаються вниз, тобто мікроорганізми, спочатку на передньому рівні або верхній шар наповнювача, можуть з’являтися на задньому рівні або нижньому шарі наповнювача. Тому подібні зміни можна спостерігати за допомогою спостереження за біологічною фазою до висновку в концентрації стічних вод або навантаження на мул.
72. Що означає загальний показник кількості бактерій у воді?
Загальна кількість бактерій відноситься до кількості колоній, вирощених у 1 мл зразка води в середовищі поживних речовин після культивування при 37 ° С протягом 24 год. Одиниця вимірювання, як правило, є загальною кількістю бактерій, що містяться в кожній мл води. Загальна кількість бактерій у воді часто пов'язана зі ступенем органічного забруднення в водоймі, і є одним з важливих показників для оцінки ступеня забруднення води та можливої шкоди людському організму.
Метод аналізу загальної кількості бактерій використовує стандартний метод пластини для підрахунку бактерій у зразку води, що є методом визначення щільності аеробних та факультативних анаеробних гетеротрофних бактерій у воді. Однак, оскільки жодна база поживних речовин або будь -який стан навколишнього середовища не можуть відповідати фізіологічним вимогам усіх бактерій у зразку води, а бактерії у воді можуть існувати у вигляді окремих осіб, пар, ланцюгів, кластерів або кластерів, вимірювана кількість колоній фактично нижча, ніж кількість бактерій, які фактично виживають у пробуваному зразку води.
73. Які запобіжні заходи для визначення загальної кількості бактерій?
Використовуйте метод асептичної роботи, щоб поглинати 1мл зразка води або 2 - 3 розведених зразків води з відповідними кратними розведенням, вводити їх у стерилізовану пластину, потім налити 15 мл середовища поживних речовин і ретельно перемішайте його з проба води, зробіть два паралельні зразки для кожного тестування.
Після культури кількість колонії табличок повинна бути здійснена негайно. Якщо підрахунок повинен бути відкладений, пластину можна зберігати в середовищі 5-10 ° C, але не більше 24 годин, і ця практика не повинна використовуватися як звичайний метод експлуатації.
Підраховуючи колонії тарілки, ви можете спостерігати неозброєним оком. Щоб запобігти упущенні, використовуйте лупу, щоб перевірити, якщо це необхідно. Для тих колоній, які виглядають схожими і близькі один до одного, але не торкаються, доки відстань менше, ніж діаметр найменшої колонії, їх слід рахувати окремо. Ті колонії, які перебувають у тісному контакті, але мають різні зовнішності (морфологія чи колір), також слід рахувати окремо.
При обчисленні середньої кількості колонії одного і того ж розведення, якщо одна з пластин має великі колонії пластівців, її не слід використовувати, а пластини без пластівців повинні використовуватися як кількість колонії розведення. Якщо колонії пластівців менше половини пластини, а розподіл решти колоній дуже рівномірно, кількість колонії 1/2 пластини з рівномірним зростанням може бути помножена на 2, щоб представити кількість колонії всієї пластини.
Результатом загальної кількості бактерій є загальна кількість колоній у кожній тарілці або середня кількість колоній паралельних експериментальних пластин одного і того ж розведення, помноженого на розведення кратного. Коли кінцевий результат знаходиться в межах 100, результат реєструється відповідно до фактичної кількості колоній; Коли він перевищує 100, використовуються дві значущі цифри та виражаються як показник 10. Якщо кількість колоній не може бути підрахована, при повідомленні про результат слід відзначити.
74. Як обчислити загальну кількість бактерій у зразку води на основі результату кількості колонії?
При обчисленні результатів випробувань загальної кількості бактерій необхідно порівняти та обчислити на основі середньої кількості колоній при різних розведенні. Метод такий:
⑴ Спочатку виберіть випадок, коли середня кількість колоній становить від 30 до 300 для обчислення. Коли середня кількість колоній при одному розведенні відповідає цьому діапазону, середня кількість колоній, помножених на його розведення, використовується в результаті загальної кількості бактерій у зразку води.
⑵ Якщо середня кількість колоній при двох розведеннях становить від 30 до 300, метод розрахунку слід визначити відповідно до співвідношення двох. Якщо співвідношення менше 2, середній показник середньої кількості колонії, помножену на кратне розведення, використовується в результаті загального кількості бактерій зразка води; Якщо співвідношення перевищує 2, менший із середнього кількості колонії, помноженої на її розведення, використовується в результаті загального кількості бактерій зразка води.
⑶ Якщо середня кількість колонії всіх розведення перевищує 300, середня кількість колонії найбільшого розведення множинного, помноженого за його розведенням, множина повинна використовуватись в результаті загальної кількості бактерій зразка води.
⑷ Якщо середня кількість колонії всіх розведення становить менше 30, середня кількість колонії найменшого розведення множинного, помноженого за його розведенням, множинна повинна використовуватися в результаті загальної кількості бактерій зразка води.
⑸ Якщо середня кількість колонії всіх розведення не становить від 30 до 300, середня кількість колоній, найближчу до 30 або 300, помножена на його розведення, множинна повинна бути використана внаслідок загальної кількості бактерій зразка води.
75. Що означає кількість коліформ (значення)?
Коліформні бактерії відносяться до класу аеробних або факультативних анаеробних, лактозних ферментів, грамнегативних, без спорів, тому їх іноді також називають фекальними коліформами або кишковою паличкою. Коліформні бактерії можуть виробляти кислоту та газ після культивування в лактозовій середовищі при 37oC протягом 24 годин. Кількість (значення) коліформних бактерій, як правило, вимірюється в кількості коліформних бактерій, що містяться в 1 л або 100 мл води.
Якщо джерело води забруднене калом, воно може бути забруднене кишковими збудниками та викликати кишкові інфекційні захворювання. Оскільки кишкові збудники становлять відносно невелику частку кількості мікроорганізмів, часто дуже важко відокремити патогени від води, особливо водопровідної води. Коліформні бактерії - це найпоширеніший і найбільший тип бактерій серед кишкових аеробних бактерій, тому їх часто використовують як індикаторні бактерії для забруднення калового. Тобто кількість коліформних бактерій у воді використовується для оцінки того, чи є джерело води, забруднене калом, і виявляється можливість висновку, що джерело води забруднене кишковими збудниками.
76. Які методи визначення кількості бактерій коліформ?
Існують два загальноприйняті методи визначення загальних коліформних бактерій: метод бродіння мульти-трубки та метод мембранного фільтра.
Метод бродіння мульти-трубки заснований на характеристиках коліформних бактерій, таких як лактозне бродіння, грамнегативне фарбування, без спор та стрижня. Він випробовується через три етапи для визначення загальної кількості бактерій коліформ у зразку води. Метод ферментації з мульти-трубкою використовує найбільш вірогідне число для вираження експериментальних результатів, також відомих як MPN. Це насправді метод оцінки щільності та санітарної якості кишкової палички у водоймах на основі статистичної теорії. Ця оцінка, як правило, більша, ніж фактична кількість. Орієнтовне значення кількості коліформ визначається розведенням, яке показує як позитивні, так і негативні результати. При розробці кількості повторень, необхідних для тестування на проби води, воно повинно базуватися на точності необхідних даних.
Метод мембранного фільтра використовує спеціальну стерилізовану мікропористу мембрану для фільтрації зразка води. Після того, як бактерії потрапляють на мембрану, мембрана прикріплюється до культурного середовища сульфіту фуксину для культури. Оскільки бактерії коліформ можуть бродувати лактозу, фіолетово-червоні колонії з металевим блиском з’являться після вирощування на фільтрувальній мембрані. Підраховуючи кількість колоній з цією характеристикою на фільтрувальній мембрані, можна обчислити кількість коліформних бактерій, що містяться в кожному літі зразка води. Метод фільтрувальної мембрани може виміряти більший об'єм зразків води і може отримати результати швидше, ніж метод бродіння багатотрубки, але ефект поганий, коли помутніння висока, а щільність не Е. Бактерії палички високі.
77. Що таке залишковий хлор?
Залишковий хлор - хлор, що залишається у воді після того, як вода дезінфікується хлором протягом певного періоду часу. Його функція полягає у підтримці безперервної бактерицидної здатності. З моменту, коли вода потрапляє в мережу труб до водної точки, ефект дезінфікуючого засобу у воді повинен підтримуватися, щоб запобігти можливих пошкодженню збудника та повторного зростання. Це вимагає, щоб кількість дезінфікуючого засобу, що додається до води, не тільки відповідала потребам вбивства збудників у воді, але й зберігає певну кількість залишкової кількості, щоб запобігти повторному зростанню збудників під час процесу транспортування води. Якщо використовується дезінфекція хлору, то частина дезінфікуючого засобу, що перевищує потреби дезінфекції на той час, є залишковим хлором.
Залишок хлору має дві форми: вільний залишковий хлор (CL2, HOCL та OCL-) та комбінований залишковий хлор (NH2CL, NHCL2 та NCL3). Ці дві форми можуть існувати в одному зразку води одночасно, а сума двох називається загальним залишковим хлором. Вільний залишковий хлор має сильну бактерицидну здатність, але його легко розкладати. Комбінований залишковий хлор має слабку бактерицидну здатність, але триває довше у воді. Як правило, коли у воді немає аміаку або амонію, залишковий хлор є вільним залишковим хлором, тоді як у воді є аміак або амоній, залишковий хлор зазвичай містить лише комбінований хлор, а іноді і залишковий хлор та комбінований залишковий хлор. Кількість залишкового хлору повинна бути доречною. Занадто низький не відіграватиме роль у запобіганні та лікуванні збудників. Занадто високий не тільки збільшить вартість дезінфекції, але й може заподіяти шкоду людському організму при контакті з людським тілом.
Концептуально залишковий хлор відноситься до дезінфікуючих речовин з газом та хлором. При використанні інших нехлорних дезінфікуючих засобів, таких як діоксид хлору, залишковий хлор слід розуміти як решту дезінфікуючого засобу, залишеного у воді після певного періоду контакту.
78. Які методи визначення залишкового хлору? Які їх відповідні сфери застосовні?
Визначення залишкового хлору може здійснюватися шляхом титрування йоду, о-толідинової візуальної колориметрії, N, N-диетил-P-фенілендіаміну (DPD), титрування заліза (GB 11897-89), N, N-діетил-P-фенілендіаміну спектрофотометрію (GB 11898-89), тощо. залишковий хлор у зразку води; Метод зорової колориметрії O-толідину може визначити загальний залишковий хлор та вільний залишковий хлор відповідно, змінюючи процедуру експлуатації; N, N-діетил-P-фенілендіамін метод титрування або метод спектрофотометрії може визначити вільний хлор або загальний хлор у діапазоні концентрації 0,03-5 мг/л, а також змінюючи операційну процедуру, монохлорамін, дихлорамін та деякі комбіновані хлорині компоненти також можуть бути визначені відповідно.
Метод титрування йоду підходить для зразків води із загальним залишковим вмістом хлору, що перевищує 1 мг/л, і є загально використовуваним методом визначення кількості доданого хлору. О-толідин візуальний колориметричний метод простий в експлуатації і є загальним методом визначення залишкового хлору в питній воді. Діапазон вимірювання становить 0,01-10 мг/л. N, N-діетил-P-фенілендіамін-метод титрування або метод спектрофотометрії має високу чутливість і може визначати зразки води з низьким вмістом хлору. Він підходить для визначення загального наявного хлору в стічних водах, що містить органічні речовини. Діапазони вимірювання двох методів становлять 0,05-1,5 мг/л і 0,03-5 мг/л відповідно.
